本站小編為你精心準(zhǔn)備了紅曲米糖化酶提取工藝研究參考范文,愿這些范文能點(diǎn)燃您思維的火花,激發(fā)您的寫作靈感。歡迎深入閱讀并收藏。
《福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)》2016年第8期
摘要:
研究了固液比、提取溫度和時(shí)間對(duì)制備的福建紅曲米粗酶液酶活的影響,比較了以碘量法、DNS法和菲林試劑法的紅曲米糖化力測(cè)定結(jié)果,并進(jìn)行紅曲黃酒釀造驗(yàn)證糖化力檢測(cè)試驗(yàn)。結(jié)果表明,紅曲米糖化酶最佳提取方式為選擇固液比(m∶V)=1g∶25mL,紅曲米粉末于緩沖液溶解搖勻后立即過(guò)濾,取濾液檢測(cè)。碘量法與DNS法均為紅曲米糖化酶適宜的檢測(cè)方法,兩種方法檢測(cè)數(shù)據(jù)具有可比性。從時(shí)效性考慮,碘量法適宜少量樣品測(cè)定,DNS法適宜用于快速測(cè)定多個(gè)樣品。經(jīng)釀造驗(yàn)證,紅曲米糖化力的測(cè)定值與以其為糖化劑的黃酒出酒率檢測(cè)結(jié)果是一致。
關(guān)鍵詞:
紅曲米;糖化酶;糖化力
紅曲米是我國(guó)傳統(tǒng)發(fā)酵食品,以秈稻、粳稻、糯米等稻米為原料,用紅曲霉菌發(fā)酵而成,在釀造福建黃酒過(guò)程中,發(fā)揮了提供色澤、風(fēng)味和糖化等作用[1-2]。糖化力是衡量紅曲米糖化力作用強(qiáng)弱的一個(gè)重要指標(biāo)。然而,如何判斷紅曲米糖化力強(qiáng)弱至今沒(méi)有統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn)。糖化酶提取方法直接影響到紅曲米糖化力測(cè)定的高低,提取方式就有很多種,如溫小英[3]等采用35℃浸提1h的方法提取,汪志君[4]等采用30℃浸提1h,馬歌麗[8]等采用緩沖液直接提取。不同的提取方法對(duì)糖化酶活力影響不同,高溫長(zhǎng)時(shí)的提取方法有可能造成酶活損失。同時(shí),測(cè)定糖化力的方法有很多,國(guó)標(biāo)針對(duì)糖化酶制劑采用碘量法[5],該方法準(zhǔn)確可靠,操作復(fù)雜,尤其在處理大量樣品時(shí),分析速度慢,對(duì)糖化力較低的樣品則顏色變化不明顯,判斷誤差較大;胡衛(wèi)明[6]、馬耀宏[7]等采用菲林試劑法,此法應(yīng)用較為廣泛,但張鳳英[8]等認(rèn)為其影響因素較多,且操作繁瑣、時(shí)間長(zhǎng),測(cè)定技術(shù)要求高,結(jié)果差異大;白利濤[9]、馬歌麗[10]等研究了DNS法測(cè)定糖化酶活力,認(rèn)為DNS法和碘量法在精密度和正確度上都無(wú)顯著差異,操作簡(jiǎn)便,對(duì)于多個(gè)樣品可實(shí)現(xiàn)快速測(cè)定;許明明[11]等采用試飯法直接測(cè)定。本研究考察了固液比、提取溫度和提取時(shí)間對(duì)粗酶提取液酶活的影響,同時(shí)對(duì)比了碘量法、DNS法和菲林試劑法,并對(duì)釀造紅曲米糖化力檢測(cè)進(jìn)行了驗(yàn)證試驗(yàn),以期為釀造紅曲米檢測(cè)技術(shù)規(guī)程的制訂以及紅曲米糖化力評(píng)價(jià)提供科學(xué)依據(jù)。
1材料與方法
1.1原料
紅曲米,由福建永春、平湖、三明、寧德等地收集。
1.2儀器與藥品
GX-04多功能粉碎機(jī),上海高翔食品機(jī)械廠;電熱恒溫水浴鍋;BS224S電子天平,賽多利斯科學(xué)儀器。
1.3試驗(yàn)方法
1.3.1試劑
0.05mol•L-1乙酸-乙酸鈉緩沖溶液(pH4.6),DNS試劑,200g•-1氫氧化鈉,20g•-1可溶性淀粉溶液,0.1%葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。
1.3.2粗酶液提取
紅曲米用多功能粉碎機(jī)打成粉末(80目),精確稱取適量粉末,按試驗(yàn)設(shè)計(jì)以0.05mol•L-1乙酸-乙酸鈉緩沖溶液為溶劑,經(jīng)一定溫度、時(shí)間下浸提后抽濾,洗滌3次,收集濾液定容至250mL,待用。
1.3.3單因素試驗(yàn)
為了考察固液比、提取溫度和時(shí)間對(duì)粗酶提液酶活的影響,按1.3.2方法進(jìn)行以下3個(gè)單因素試驗(yàn)。固液比(m/g∶V/mL)分別為1∶100、1∶50、1∶25、2∶25、3∶25、4∶25、5∶25,在40℃水浴中進(jìn)行浸提40min;以較優(yōu)固液比,在4、20、30、40、50℃水浴中浸提40min;以較優(yōu)固液比,在最適溫度水浴中分別進(jìn)行浸提0、10、20、30、40min。每處理重復(fù)2次。
1.43種檢測(cè)方法比較
1.4.1碘量法
參考GB8276-2006,略作修改。糖化酶酶解:取兩支50mL比色管(A、B管),分別加入可溶性淀粉溶液10mL和乙酸-乙酸鈉緩沖液8mL,搖勻。于40℃恒溫水浴中預(yù)熱5~10min。在B管中加入待測(cè)酶液10.0mL,立即記時(shí),搖勻。在此溫度下準(zhǔn)確反應(yīng)60min后,立即向A、B管中各加氫氧化鈉溶液0.2mL,搖勻,同時(shí)將兩管取出,迅速用水冷卻,并于A管中補(bǔ)加待測(cè)酶液10.0mL作為空白對(duì)照。測(cè)定:吸取上述A、B兩管中的反應(yīng)液各5.0mL,分別于兩個(gè)碘量瓶中,準(zhǔn)確加入碘標(biāo)準(zhǔn)溶液10.0mL,再加氫氧化鈉溶液15mL,邊加邊搖勻,并于暗處放置15min,取出。用水淋洗瓶蓋,加入硫酸溶液2mL,用硫代硫酸鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液滴定藍(lán)紫色溶液,直至剛好無(wú)色為其終點(diǎn),分別記錄空白和樣品消耗硫代硫酸鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液體積(VA、VB)。紅曲米酶活力單位按下式計(jì)算:X=(VA-VB)×cST×cG×(Vt/Vx)×(1/10)×n式中:X為樣品的酶活力單位即1g紅曲米在40℃、pH4.6的條件下,1h水解可溶性淀粉的產(chǎn)生1mg葡萄糖為1個(gè)酶活力單位(U•g-1);VA為滴定空白時(shí),消耗硫代硫酸鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的體積(mL);VB為滴定樣品時(shí),消耗硫代硫酸鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的體積(mL);cST為硫代硫酸鈉標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液的準(zhǔn)確濃度(mol•L-1);cG為葡萄糖的摩爾質(zhì)量,90.05g•mol-1;Vt為反應(yīng)液的總體積,24.2L;Vx為吸取反應(yīng)液的體積,5L;n為稀釋倍數(shù)。
1.4.2DNS法
(1)標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:準(zhǔn)確稱取105~110℃干燥后的葡萄糖50mg,用蒸餾水溶解,定容至50mL容量瓶中,配置成1mg•mL-1標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別稀釋為0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mg•mL-1的標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,分別吸取0.5mL,分別于在25mL比色管中,加入1.5mLDNS試劑混勻,在沸水浴中加熱5min后取出迅速冷卻至室溫,加水10mL。以試劑空白作參比,用1cm比色皿在520nm測(cè)定吸光度。以葡萄糖含量為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,獲得線性回歸方程。
(2)糖化力測(cè)定:糖化酶酶解方法與碘量法的相同測(cè)定方法參考馬歌麗[10]、孫淑琴[12],上述A、B兩管中的反應(yīng)液稀釋至0.5mL,分別于在25mL比色管中,加入1.5mLDNS試劑在沸水浴中加熱5min后取出迅速冷卻至室溫,加水10mL。以試劑空白作參比,用1cm比色皿在520nm測(cè)定吸光值,分別通過(guò)線性回歸方程求出葡萄糖濃度。紅曲米酶活力單位按下式計(jì)算:X=(cB-cA)×(Vt/VEX)×(VET/m)×n式中:X為樣品的酶活力,即1g紅曲米在40℃、pH4.6的條件下,1h水解可溶性淀粉的產(chǎn)生1mg葡萄糖為1個(gè)酶活力單位(U•g-1);cB為樣品管的葡萄糖質(zhì)量濃度(mg•mL-1);cA為樣品空白管的葡萄糖質(zhì)量濃度(mg•mL-1);Vt為反應(yīng)液的總體積,單位為毫升(28.2mL);VEX為吸取待測(cè)酶液的體積,為10mL;VET為提取待測(cè)酶液的總體積,為25mL;m為稱取紅曲米粉末重量(g);n為稀釋倍數(shù)。
1.4.3菲林試劑法
方法參考馬耀宏[7]等,略作修改。吸取25mL12%可溶性淀粉溶液,置于50mL容量瓶,于35℃水浴預(yù)熱10min,加入5mL酶提取液,搖勻,于35℃糖化1h,迅速加入15mL0.1mol•L-1NaOH,終止酶解反應(yīng),冷卻至室溫,定容。吸取斐林試劑甲、乙液各5mL,加入適量的0.1%標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖液(使滴定時(shí)消耗0.1%標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖液在1mL以內(nèi)),準(zhǔn)確加入5mL上述酶解液,搖勻,于電爐上加熱至沸騰,立即用0.1%標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液滴定至藍(lán)色消失,操作在1min內(nèi)完成,并同時(shí)做空白液滴定。計(jì)算公式:X=(V0-V)×C×(1/m)×105×n式中:X為樣品的酶活力單位即1g紅曲米在40℃、pH4.6的條件下,1h水解可溶性淀粉的產(chǎn)生1mg葡萄糖為1個(gè)酶活力單位(U•g-1);V0為滴定空白時(shí),消耗0.1%標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖液體積(mL);V為滴定樣品時(shí),消耗0.1%標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖液體積(mL);c為標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液質(zhì)量濃度(g•mL-1);m為紅曲重量,單位為(g);n為稀釋倍數(shù)。
1.5紅曲黃酒釀造驗(yàn)證試驗(yàn)
采用傳統(tǒng)發(fā)酵法,以糯米為原料,以5種紅曲米為糖化劑,糯米經(jīng)浸泡、蒸煮攤涼,以米飯∶水為1∶1落缸,按大米用量的10.0%接種紅曲米,控溫30℃發(fā)酵,發(fā)酵72h后離心,檢測(cè)酒精度和出酒率。酒精度:采用高效液相色譜法測(cè)定酒精度[13]。殘?zhí)恰⒖偹釡y(cè)定:參考GB/T13662-2008黃酒[14]中總糖、總酸的檢測(cè)。出酒率(以成品酒15度計(jì))的測(cè)定:出酒率%=酒精度(%)×[出酒量(kg)/大米用量(kg)×100%1.6數(shù)據(jù)分析采用DPS數(shù)據(jù)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
2結(jié)果與分析
2.1液固比對(duì)粗酶提取的影響
采用DPS數(shù)據(jù)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,不同液固比處理所得到的粗酶提取液酶活見(jiàn)圖1。結(jié)果表明,固液比(m/g∶V/mL)分別為1∶100、1∶50、1∶25時(shí),粗酶提取液酶活最高,三者無(wú)顯著差異(P>0.05),原因是緩沖液提取酶的量達(dá)到最大量,為操作簡(jiǎn)便,選擇固液比為1∶25。
2.2浸提溫度對(duì)粗酶提取的影響
采用DPS數(shù)據(jù)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,當(dāng)固液比m/g∶V/mL=1∶25時(shí),不同浸提溫度處理所得到的粗酶提取液酶活見(jiàn)圖2。結(jié)果表明,提取溫度越低,酶活越低,原因可能是當(dāng)提取溫度升高,酶失活的比率逐漸上升,酶活降低;當(dāng)提取溫度為4℃時(shí),酶活最高,與其他溫度提取的酶活相比,差異均達(dá)極顯著水平(P<0.01)。
2.3浸提時(shí)間對(duì)粗酶提取的影響
采用DPS數(shù)據(jù)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,在固液比m/g∶V/mL=1∶25、浸提溫度4℃時(shí),不同浸提時(shí)間處理所得到的粗酶提取液酶活見(jiàn)圖3。結(jié)果表明,不同的浸提時(shí)間對(duì)粗酶提取液酶活沒(méi)有顯著差異,為了操作簡(jiǎn)便,選擇混勻后立即過(guò)濾。
2.43種檢測(cè)方法比較
對(duì)11種不同產(chǎn)地、不同來(lái)源的紅曲米進(jìn)行初篩,選擇5種糖化力差異較大的紅曲米(B1、R12、R21、R32、R8),分別采用了碘量法、DNS法、菲林試劑法3種檢測(cè)方法進(jìn)行了糖化力測(cè)定,從圖4可以看出,碘量法與DNS法檢測(cè)結(jié)果基本一致,5種紅曲米糖化力大小順序依次為B1、R12、R21、R32、R8,排序一致,兩種方法的測(cè)定結(jié)果無(wú)顯著差異;菲林試劑法檢測(cè)5種紅曲米糖化力大小順序依次為B1、R21、R32、R8、R12,只有B1排序有相關(guān)性,其余4個(gè)樣品檢測(cè)結(jié)果均有一定的偏差,與張鳳英[6]等研究結(jié)果一致,同時(shí)菲林試劑法檢測(cè)值偏低。3種檢測(cè)方法對(duì)時(shí)間、試劑、設(shè)備等要求見(jiàn)表1,菲林試劑法操作難度較難,誤差較大。檢測(cè)方法可根據(jù)實(shí)際生產(chǎn)需求進(jìn)行選擇。在樣品數(shù)量較少、設(shè)備條件有限的情況下,適宜選擇碘量法檢測(cè)紅曲米糖化力;在樣品數(shù)量較多,有分光光度計(jì)的條件下,可以選擇DNS法快速測(cè)定多個(gè)樣品,兩種方法的測(cè)定值具有可比性。
2.5紅曲米糖化力驗(yàn)證試驗(yàn)
紅曲米糖化力的高低,直接反映其液化糖化大米淀粉產(chǎn)生可發(fā)酵糖的水平,最終關(guān)系到出酒率。從圖5可以看出,紅曲米糖化力的差異與以其為糖化劑的黃酒出酒率的差異是一致的,進(jìn)一步說(shuō)明了檢測(cè)數(shù)據(jù)是可信的。
3討論與結(jié)論
紅曲的糖化力是反映紅曲質(zhì)量的重要標(biāo)準(zhǔn)之一。受制曲原料、加工工藝和生產(chǎn)條件的影響,不同產(chǎn)地、不同廠家甚至不同批次生產(chǎn)的酒曲,都存在較大差異。因此,針對(duì)紅曲建立一個(gè)有效的糖化力評(píng)價(jià)方法,對(duì)于穩(wěn)定酒曲質(zhì)量、制曲企業(yè)制訂行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)、釀酒企業(yè)選擇使用紅曲,具有重要的指導(dǎo)意義。DNS法的原理是糖化酶水解淀粉產(chǎn)生的葡萄糖與3,5-二硝基水楊酸(DNS)反應(yīng)生成的棕紅色3-氨基-5硝基-水楊酸,在520nm波長(zhǎng)處的光吸收強(qiáng)度與還原糖含量呈正比,利用分光光度計(jì)快速簡(jiǎn)便的測(cè)定酒曲糖化力[9]。試驗(yàn)結(jié)果表明,DNS法與碘量法檢測(cè)結(jié)果基本一致,與以其為糖化劑的黃酒出酒率一致,可快速測(cè)定,且操作簡(jiǎn)便。碘量法與DNS法均為紅曲米糖化酶適宜的檢測(cè)方法,兩方法檢測(cè)數(shù)據(jù)具有可比性、數(shù)據(jù)可信。從時(shí)效性考慮,碘量法適宜少量樣品測(cè)定,DNS法適宜用于快速測(cè)定多個(gè)樣品。斐林試劑法的原理是,利用糖化酶水解可溶性淀粉為葡萄糖,葡萄糖與斐林試劑反應(yīng),將二價(jià)銅在堿性條件下還原成一價(jià)的銅,后者與黃血鹽生成不沉淀的絡(luò)合物.用次甲基藍(lán)為指示劑確定反應(yīng)終點(diǎn)[8]。斐林試劑法的影響因素很多,操作繁瑣、時(shí)間長(zhǎng),試驗(yàn)結(jié)果表明,測(cè)定結(jié)果與碘量法、DNS法存在較大的差異。
參考文獻(xiàn):
[1]韓興林,王建耀,王廣峰,等.清香型大曲糖化力的簡(jiǎn)單分析[J].釀酒科技,2009,(9):68-70.
[2]倪莉,吳智廣,張?chǎng)=t曲中的紅曲霉的生理生化特性研究[J].福州大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2009,37(6):931-934.
[3]溫小英,廖勤儉,李揚(yáng)華.一種酒醅糖化力的測(cè)定方法[J].釀酒科技,2013,(5):100-104.
[4]汪志君,夏艷秋,方維明.植酸對(duì)黃曲霉菌(Aspergillusflavus)糖化力的影響[J].中國(guó)釀造,2003,22(5):14-16.
[5]中華人民共和國(guó)國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局,中國(guó)國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會(huì).GB8267-2006食品添加劑糖化酶制劑[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2006.
[6]胡衛(wèi)明,高永強(qiáng).新工藝黃酒麥曲的工藝及性能檢測(cè)[J].釀酒,2013,40(1):103-106.
[7]馬耀宏,孟慶軍,楊艷,等.大曲糖化力的快速測(cè)定方法[J].中國(guó)釀造,2014,33(3):128-131.
[8]張鳳英,吳芝岳,楊武英.測(cè)定小曲糖化力新方法的探討[J].釀酒科技,2006,(4):99-104.
[9]白利濤,張麗萍.糖化酶活力測(cè)定方法研究[J].釀酒科技,2012,(2):99-102.
[10]馬歌麗,魏泉增,張志剛.分光光度法測(cè)定大曲糖化酶活力探討[J].中國(guó)釀造.2008,27(17):69-71.
[11]許明明,呂旭聰,劉志彬,等.福建藥白曲中根霉的分離鑒定及菌株特性分析[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2014,14(3):205-210.
[12]孫淑琴,邵冬梅.比色法快速測(cè)定糖化酶活力新方法[J].河北省科學(xué)院學(xué)報(bào),1997,(2):35-39.
[13]王成濤,張嬋,尹勝,等.兒茶酚對(duì)運(yùn)動(dòng)發(fā)酵單胞菌抗氧化防御體系的影響[J],中國(guó)食品學(xué)報(bào),2014,14(8):21-26.
[14]中國(guó)輕工業(yè)聯(lián)合會(huì).GB/T13662-2008黃酒[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2008.
作者:林曉婕 梁璋成 黃飛 任香蕓 林曉姿 何志剛 單位:福建省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)業(yè)工程技術(shù)研究所 福建省農(nóng)產(chǎn)品 (食品)加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室