本站小編為你精心準備了辣椒堿納米乳粒徑測定參考范文，愿這些范文能點燃您思維的火花，激發您的寫作靈感。歡迎深入閱讀并收藏。

1儀器與試藥

1.1儀器

JB??2型恒溫磁力攪拌器（上海智光儀器儀表有限公司），十萬分之一電子分析天平（BP211D，德國賽多利斯），F??4500Hitachi熒光分光光度計（日本日立公司），ZetasizerNanoZS90納米粒度及Zeta電位分析儀（英國MalvernInstrumentsLtd），JEL??IOOCXⅡ透射電鏡(日本)，ShimadzuLC??10A高效液相色譜儀（日本島津公司），ShimadzuRF??10AXL熒光檢測器（日本島津公司）。

1.2試藥

辣椒堿原料（貴州安順生達生物科技開發公司，純度≥97%，批號20030503），辣椒堿對照品（SIGMA公司，純度≥97％，批號2069698），中鏈脂肪酸三甘油酯（MCT，德國SasolGermanyGmbH，iv級，批號061224），吐溫80（上海申宇醫藥有限公司，藥用級，批號080201），豆磷脂（上海金伴藥業有限公司，藥用級，批號021109），葡聚糖SephadexG??50（北京拜爾迪生物公司，批號17??0043??02），丙二醇（天津市富宇精細化工有限公司，批號071012），色譜甲醇（天津四友化學試劑廠），超純水，其余試劑均為分析純。

2方法與結果

2.1納米乳處方篩選

2.1.1納米乳的制備稱取適量的藥物、油、乳化劑、助乳化劑，攪拌混勻，50℃水浴加熱溶解，得均勻透明的溶液；在磁力攪拌下將此溶液逐滴加入60～65℃蒸餾水中乳化。

2.1.2油、表面活性劑種類分別以大豆油、MCT、油酸乙酯為油相，吐溫80、泊洛沙姆F68、豆磷脂為乳化劑，考察外觀及700nm透光率（此波長藥物、輔料自身無吸收，透光率僅與乳滴大小成反比），初步篩選乳劑的組成，結果見表1。結果表明：乳化劑與油的質量比為4∶1時，乳化劑的乳化能力由強到弱排列是：吐溫80＞泊洛沙姆F68＞豆磷脂，故選擇吐溫80為乳化劑；油相被乳化由強到弱排列是：油酸乙酯≈MCT＞大豆油，而MCT已被歐洲藥典準許用于注射劑，且已有上市產品［12］436-439，故選擇MCT為油相。

表1油相、表面活性劑種類對粒徑的影響（略）

br1Effectofoilphaseandsurfactantsonparticlesize

2.1.3表面活性劑用量吐溫80與MCT按不同質量比，分別以4∶1、3∶1、2.5∶1、2∶1、1∶1混合，按“2.1.1”項制備，考察外觀及700nm透光率，結果見表2。結果表明：在MCT與丙二醇的量、制備工藝相同前提下，吐溫80∶MCT≥2.5∶1時能形成微乳。因此，選擇吐溫80∶MCT=2.5∶1作為表面活性劑與油最低比例。

2.1.4復合乳化劑比例固定（吐溫80+豆磷脂）∶MCT=2.5∶1，將吐溫80與豆磷脂按不同質量比混合，考察方法同“2.1.3”項，結果見表3。結果表明：當吐溫80∶豆磷脂≥2∶1時能形成微乳。為減少吐溫80的用量，選擇吐溫80∶豆磷脂=2∶1為復合乳化劑比例。

2.1.5油濃度固定吐溫80∶豆磷脂∶MCT=0.25∶0.125∶0.15，按“2.1.1”項制備，考察MCT不同濃度時的包封率。由表4可見，辣椒堿納米乳包封率隨MCT濃度的增大而相應提高，當MCT濃度上升至1.50%，包封率為85.22%，符合藥典的相關規定（包封率＞80%）。

2.2納米乳制備工藝優化

2.2.1乳化溫度選擇將藥物、油、復合乳化劑、助乳化劑按處方量混勻，50℃水浴加熱溶解，得均勻透明的溶液，在磁力攪拌下將此溶液分別逐滴加入60～65℃與常溫（25℃）蒸餾水中乳化30min。辣椒堿納米乳包封率結果見表5。結果表明：60～65℃乳化的包封率略高于常溫乳化。為簡化生產工藝，選擇常溫（25℃）乳化。

表2油與表面活性劑比例對粒徑的影響（略）

br2Effectoftheproportionbetweenoilandsurfactantsonparticlesize

表3復合乳化劑比例對粒徑的影響（略）

br3Effectoftheproportionofcompositeemulsifiersonparticlesize

表4油濃度對辣椒堿納米乳包封率的影響（略）

br4Effectofoilconcentrationonentrapmentefficiencyofcapsaicinnanoemulsion

2.2.2油、水滴加順序將藥物、油、復合乳化劑、助乳化劑按“2.2.1”項制備均勻透明的溶液，在磁力攪拌下，分別將此溶液逐滴加入25℃蒸餾水中，以及將25℃蒸餾水一次傾入該溶液中乳化30min，包封率結果見表6。結果表明：油、水滴加順序對包封率影響不大。考慮今后工業生產更簡單，選擇蒸餾水一次傾入油中乳化的方式。

表5溫度對辣椒堿納米乳包封率影響（略）

br5Effectoftemperatureonentrapmentefficiencyofcapsaicinnanoemulsion

表6制備工藝對辣椒堿納米乳包封率影響（略）

br6Effectofpreparationtechnologyonentrapmentefficiencyofcapsaicinnanoemulsion

2.3辣椒堿納米乳注射劑的制備

依據辣椒堿納米乳處方設計與工藝研究結果，結合注射劑的制備工藝，擬定辣椒堿納米乳注射劑制備工藝如下：按處方量稱取辣椒堿、油、乳化劑、助乳化劑，50℃水浴加熱溶解，得均勻透明的溶液；在磁力攪拌下，將常溫蒸餾水（0.22μm濾過滅菌）傾入該溶液乳化30min，形成淡黃色、澄清透明的辣椒堿納米乳。于潔凈環境下，0.22μm微孔濾膜過濾辣椒堿納米乳，將續濾液灌裝在已滅菌的2mL、5mL安瓿中，拉封。將灌封好的辣椒堿納米乳注射劑121℃、0.1MPa熱壓滅菌15min，即得。

2.4形態與粒徑測定

2.4.1形態測定取適量辣椒堿納米乳，滴在覆有支持膜的銅網上，靜止10min后用濾紙片吸干，滴加1～3％磷鎢酸溶液于銅網上負染5min，自然揮干，用透射電子顯微鏡觀察并拍攝照片，結果見圖1。結果表明:納米乳劑中的乳滴呈類球形，粒徑分布均勻。

圖1辣椒堿納米乳透射電鏡照片(×50000)（略）

Figure1Transmissionelectronphotographofcapsaicinnanoemulsion(×50000)

2.4.2粒徑大小與分布測定取辣椒堿納米乳適量，采用動態光散射（dynamiclightscattering,DLS）原理的Nicomp380/ZLS激光粒度/動電位分析儀測定，其粒徑與粒度分布見圖2。結果表明：辣椒堿納米乳的平均粒徑6.16nm，多分散系數0.307，粒度分布均勻。

圖2辣椒堿納米乳粒徑分布圖（略）

Figure2Particlesizedistributionofcapsaicinnanoemulsion

2.5動電位測定

采用電泳光散射（electrophoreticlightscattering,ELS）法，取辣椒堿納米乳適量，室溫下置Nicomp380/ZLS激光粒度/動電位分析儀測定，動電位分布見圖3。結果表明，所得辣椒堿納米乳電位(ζ)平均值為－34.0mV。

2.6pH值測定

測定3批辣椒堿納米乳的pH值，每批測定3次，取平均值。3批乳劑的pH值分別為5.45、5.43、5.45，符合靜脈注射劑對pH值的要求。

圖3辣椒堿納米乳動電位分布圖

Figure2Zetapotentialmicroscopedistributionofcapsaicinnanoemulsion

2.7辣椒堿納米乳含量測定

2.7.1色譜條件與系統適應性試驗色譜柱為DiamonsilC18（250mm×4.6mm，5μm）；流動相為甲醇?菜??擦姿幔ㄌ寤?比70∶30∶0.1）；熒光檢測波長為λex=283nm,λem=310nm；流速為1.0mL?min-1；進樣量為20μL。辣椒堿保留時間12.3min，理論塔板數4156，拖尾因子1.13，峰形對稱，色譜圖見圖4A。

2.7.2樣品溶液的制備精密稱取0.10mg辣椒堿對照品，無水乙醇溶解并定容至10mL，取該液1.0mL，無水乙醇稀釋至10mL，搖勻，制得1.0μg/mL辣椒堿對照液。精密量取0.004%辣椒堿納米乳0.30mL（約相當于辣椒堿12μg），無水乙醇溶解并定容至10mL，超聲混勻，制得1.2μg/mL辣椒堿供試液。精密量取不含辣椒堿的空白納米乳0.30mL，同法制得陰性對照液。

2.7.3方法專屬性考察分別量取對照液、供試液及陰性對照液20μL，按上述色譜條件測定，結果表明，空白基質無干擾，且供試液與對照液保留時間基本一致，見圖4。

圖43種樣品溶液熒光??HPLC圖（略）

Figure4Fluorescence??HPLCofthreesamples

2.7.4標準曲線繪制精密稱取辣椒堿對照品0.20mg于10mL容量瓶中，無水乙醇溶解并定容至刻度，搖勻，得20μg/mL辣椒堿標準儲備液。精密吸取該儲備液0.1、0.3、0.4、0.5、1.0、2.0、3.0mL置10mL容量瓶中，無水乙醇稀釋至刻度，搖勻，制得系列濃度對照液。分別進樣20μL，按上述色譜條件測定，以對照液質量濃度（ρ）為橫坐標，峰面積（A）為縱坐標，計算回歸方程為：A=4×106ρ-224614，r=0.9997，結果表明辣椒堿在0.20～6.00μg/mL范圍內與峰面積線性關系良好。以信噪比（S/N）＝3計算，測得辣椒堿最低檢測限為0.1ng。

2.7.5精密度試驗取0.1μg/mL辣椒堿對照液，連續進樣5次，測得平均峰面積為10012711，RSD為0.54%，表明儀器精密度良好。

2.7.6重現性試驗按上述方法制備濃度為0.8、1.0、2.0、4.0、6.0μg/mL的辣椒堿供試液，各3份，以1.0μg/mL辣椒堿對照液的峰面積定量，結果各濃度辣椒堿含量平均值為91.10%、94.94%、91.03%、91.01%、90.04%；RSD（n=3）為0.37%、0.85%、0.25%、0.42%、1.7%，表明本方法重現性良好。

2.7.7穩定性試驗取供試液適量，分別于室溫放置0、2、4、6、8、12、24h后按色譜條件測定，測得峰面積日內RSD為0.32%（n=7），表明供試液在24h內穩定。每天測1次，連續測5d，峰面積日間RSD為1.5%（n=5）。

2.7.8回收率試驗精密量取0.50mL空白納米乳15份，分3組，置10mL容量瓶中，分別加入20μg/mL辣椒堿標準儲備液0.40、0.50、1.00mL，各5份，無水乙醇定容，超聲混勻，0.45μm濾過，精密吸取續濾液20μL按上述色譜條件測定，外標法計算回收率。結果高、中、低濃度平均回收率分別為100.14%、102.56%、107.25%，RSD值分別為1.30%、0.83%、0.58%（n＝5），見表7。

2.7.9含量測定精密量取0.004%辣椒堿納米乳0.50mL，無水乙醇溶解并定容至10mL，超聲混勻，得辣椒堿供試液；另精密稱取辣椒堿對照品適量，無水乙醇配成2.0μg/mL辣椒堿對照液。分別吸取辣椒堿供試液、對照液20μL，按上述色譜條件測定，外標法計算含量。結果3個批號辣椒堿含量分別為94.50%、94.55%和94.10%。

表7辣椒堿納米乳回收率（略）

br7Recoveryofcapsaicinnanoemulsion

2.8辣椒堿納米乳包封率測定

包封率測定方法參照文獻［13］:量取0.004%辣椒堿納米乳0.3mL滴到葡聚糖凝膠柱中心，2000r/min離心5min，洗脫液用無水乙醇溶解并定容至10mL，超聲混勻，按“2.7.1”項色譜條件測定，將峰面積代入標準曲線計算藥物濃度。根據式1-1計算辣椒堿納米乳的包封率。

包封率＝（ρ包封/ρ總藥）×100%（1-1）

式中ρ總藥表示辣椒堿總質量濃度，ρ包封表示納米乳中被包封辣椒堿質量濃度。測得3批辣椒堿納米乳的包封率分別為85.83%、84.50%、85.34%，RSD為0.79%。見表8。

表8辣椒堿納米乳包封率（略）

br8Entrapmentefficiencyofcapsaicinnanoemulsion

3討論

3.1影響乳滴粒徑因素

3.1.1油、表面活性劑種類油、表面活性劑種類是影響乳滴粒徑的重要因素。根據納米乳形成機理，當表面活性劑的親水親油平衡值（HLB）與油所需HLB值相當時，形成納米乳較穩定［14］。當油、表面活性劑濃度不變，分別以大豆油、油酸乙酯、MCT為油相，形成乳滴粒徑由小到大排列：吐溫80＜泊洛沙姆F68＜豆磷脂。可見，乳化劑乳化能力由強到弱排列：吐溫80＞泊洛沙姆F68＞豆磷脂。同時，表3結果也表明，乳滴粒徑隨吐溫80增加、豆磷脂減少而逐漸減小，說明吐溫80乳化能力較強。制備O/W型乳劑，所需乳化劑的HLB值在8～16范圍內，吐溫80的HLB值為15.0；而豆磷脂僅3.0，脂溶性過強，在水相體系中分散性較差，難以在油水兩相中很好的分配；相反，泊洛沙姆F68的HLB值為29.0［12］516-519，親水性強，不能在油水界面大量吸附，也難以形成牢固的界面膜，故乳化能力均較差。

油的種類同樣影響微乳的形成。如表1所示，吐溫80作乳化劑，油酸乙酯或MCT為油相時均能形成透明微乳，而大豆油不能，這可能與大豆油為長鏈植物油，較難乳化有關。依據文獻［15～18］報道，油相分子的大小以及碳鏈的長短影響微乳的形成：油相分子體積越小，對藥物的溶解能力越強；碳氫鏈越短的油越能嵌入表面活性劑中形成界面膜，所得微乳相圖區域越大。反之，碳氫鏈過長的油則不易形成微乳。因此，油酸乙酯、MCT較大豆油易乳化。

3.1.2表面活性劑用量當油、表面活性劑種類固定時，表面活性劑用量顯著影響乳滴粒徑的大小。如表2所示，吐溫80∶MCT的質量比由1∶1增大到4∶1時，透光率由0.5%增大到99.6%，可見乳滴粒徑隨表面活性劑用量增大而減小。文獻［19］也說明，納米乳中乳化劑的用量為油量的20%～30%，而普通乳中乳化劑多低于油量的10%。這是因為納米乳乳滴小界面積大，表面能高，需要濃度更高的乳化劑才能有效降低表面能，形成納米乳。但考慮到毒性，在形成納米乳前提下表面活性劑的用量應盡可能少。新晨

3.2影響包封率因素

除了油的種類影響乳滴粒徑以外，油的濃度是影響納米乳包封率的關鍵因素。當MCT由0.15g增大到1.50g時，包封率由20.07%提高到85.22%。這是因為當辣椒堿濃度不變時，增大油的量，乳化劑、助乳化劑按比例增加，藥質比隨之提高，使更多藥物溶解在油、乳化劑、助乳化劑組成的均相中，形成均勻透明的溶液；遇水乳化后藥物被包裹的比例隨之提高。此外，表5、表6說明乳化溫度與油、水滴加順序對辣椒堿納米乳包封率的影響不大。

【參考文獻】

［1］張志棟.辣椒堿的研究進展［J］.天津藥學,1997，9（2）：16-17.

［2］吳明光.新型長效鎮痛藥辣椒堿研究進展［J］.中國新藥雜志，1994，3（4）：367-369.

［3］郭峰，姜曉鐘.辣椒素的作用機制及其鎮痛應用［J］.第二軍醫大學學報,2002，23(1)：25-28.

［4］馬昭朝，王孝蓉，趙志剛.辣椒堿軟膏［J］.中國新藥雜志，2005，14（2）：123-125.

［5］龍曉英，羅佳波，嚴志紅，等.局部用辣椒堿傳遞體的制備及體內外評價［J］.藥學學報，2006，41(5)：461-466.