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《中國動物傳染病學報》2015年第三期

1材料與方法

1.1實驗動物及試劑BALB/c小鼠，昆明系小鼠購于上海斯萊克實驗動物有限公司；磺胺氯吡嗪鈉（含量99.97%，批號：091001）、磺胺嘧啶鈉（含量99.53%，批號：091001）、磺胺對甲氧基嘧啶鈉（含量99.23%，批號：090803）、磺胺氯噠嗪鈉（含量99.81%，批號：20091101）、磺胺甲氧噠嗪鈉（含量99.50%，批號：20091101）和磺胺二甲嘧啶鈉（含量99.55%，批號：090911）購于上海寶山振宗生物工程廠；40%PEG、牛血清蛋白（BSA）和卵白蛋白(OVA)購于美國Sigma公司；NaNO2和鹽酸購于國藥集團上海化學試劑公司；小鼠骨髓瘤細胞SP2/0為本實驗室保存。

1.2磺胺氯吡嗪鈉（SPZ）免疫原的制備及鑒定

1.2.1磺胺氯吡嗪鈉（SPZ）完全抗原SPZ-OVA及包被原SPZ-BSA的制備通過重氮化方法制備其免疫原及包被原。首先對SPZ進行重氮化反應：稱取SPZ10mg，用少量蒸餾水溶解，在4℃條件下同時緩慢滴加預冷的鹽酸（0.1mol/L）和NaNO2水溶液（10g/L），并用淀粉碘化鉀試紙實時監測，試紙剛變藍時停止滴加反應液，4℃避光反應10min。取25mg的OVA溶于1mL的碳酸鹽緩沖溶液（pH9.6，0.2mol/L）中，離心后取上清，在4℃條件下，逐滴加入NaOH（1mol/L）和重氮化的SPZ溶液，并持續攪拌，保證反應體系的pH值在10左右。4℃避光反應過夜，然后用PBS（pH7.4）透析，每天更換透析液3次，透析3d。將制備的SPZ-OVA分裝、標記，-20℃保存。包被抗原（SPZ-BSA）的制備，用BSA替代OVA，其他操作同上。

1.2.2完全抗原鑒定把透析好的免疫原SPZ-OVA和載體蛋白OVA用PBS配制成200ng/mL溶液，將藥物SPZ用PBS配制成50μg/mL溶液，用紫外分光光度計分別進行紫外掃描，通過比較藥物和偶聯物的紫外圖譜對偶聯結果進行驗證。

1.3單克隆抗體制備

1.3.1小鼠免疫取8周齡BALB/c小鼠2只，將SPZ-OVA用弗氏完全佐劑乳化后，足墊注射小鼠進行首次免疫，劑量為200μg/只。隨后每2周對小鼠加強免疫1次，用與首次免疫等劑量抗原和弗氏不完全佐劑乳化后，皮下多點注射免疫。細胞融合前3d，小鼠腹腔直接注射SPZ-OVA，250μg/只，進行1次加強免疫。

1.3.2細胞融合及培養細胞融合時取對數生長期小鼠骨髓瘤細胞（SP2/0）和免疫小鼠的脾細胞，以10:1的比例混合置于融合管中，在45s內加入1mL預熱的PEG，作用90s后，加入30~40mL預熱的不完全DMEM培養基，終止反應。在37℃培養箱中靜置10min后離心，棄上清后用含20%胎牛血清（FBS）的HAT完全培養基重懸細胞，將融合細胞懸液滴加到鋪有小鼠腹腔巨噬細胞的96孔板中，置于37℃、5%CO2培養箱中培養。融合后注意觀察細胞生長情況，融合后d7補加HAT培養基，觀察融合細胞生長狀況。約10~15d后，待雜交瘤細胞布滿孔底約1/5面積時，吸取細胞上清供抗體檢測。

1.3.3雜交瘤細胞的初步篩選鏡檢觀察培養孔中細胞克隆生長情況，對孔中細胞克隆不超過3個的進行標記，吸取細胞上清，然后通過間接ELISA測定抗體分泌情況。具體步驟：以0.5μg/mLSPZ-BSA包被酶標板，4℃過夜，用PBST（0.05%Tween-20PBS溶液）洗滌3~4次，每次3min，然后加200μL明膠（10g/L），37℃封閉3h，同上洗滌。加入待測細胞上清10μL，用抗體稀釋液（含5%小牛血清的PBST）補液至100μL，陰性對照加100μL抗體稀釋液，37℃孵育1.5h，同上洗滌。每孔加入100μL按1:2000稀釋的HRP標記的羊抗鼠IgG，37℃孵育1.5h，同上洗滌。每孔加入100μL新配制TMP底物顯色液，37℃避光反應10~15min，然后加入50μL硫酸溶液（2mol/L）終止反應，測量OD450值，P/N≥2.1為陽性。從陽性克隆中去除其分泌抗體對蛋白載體有反應的克隆，分別以SPZ-OVA、BSA和OVA包被，對陽性克隆再次篩選，將僅對SPZ-BSA顯色的孔判為陽性。

1.3.4對細胞陽性克隆進行亞克隆及藥物競爭抑制篩選對上述陽性細胞克隆挑選OD450值高且生長狀態好的陽性克隆按有限稀釋法進行亞克隆，同時用ci-ELISA進行第三次篩選，步驟如下：以0.025μg/mLSPZ-BSA包被過夜，37℃封閉酶標板。取陽性細胞上清2μL用1mL抗體稀釋液稀釋，稱取一定量SPZ用PBS稀釋成1000、500、0ng/mL的SPZ標準溶液，在反應孔中依次加入不同濃度SPZ標準溶液和稀釋的細胞上清各50μL，其余操作同間接ELISA，得到各反應孔OD450值并計算抑制率。將篩選出的抑制率高的細胞株按有限稀釋法繼續進行亞克隆，經多次亞克隆，待細胞上清陽性率為100%時，建株并對細胞擴大培養，液氮保存。

1.3.5腹水單克隆抗體的制備取8周齡BALB/c雌性小鼠提前3周腹腔注射石蠟油，每周1次，0.5mL/只。將擴大培養的雜交瘤細胞用葡萄糖生理鹽水重懸，于第4周腹腔接種小鼠，約106個細胞/只。接種后每天觀察小鼠狀態，約10d后可觀察到小鼠精神萎靡，腹部膨大。待小鼠瀕死不動時用針頭收集腹水，離心取上清，－70℃保存備用。

1.4單抗型及亞型鑒定用SouthernBiotech亞型鑒定試劑盒鑒定腹水單抗亞型。按試劑盒說明書操作。1.5單抗（MAb）特性分析

1.5.1MAb的IC50的確定首先用棋盤法篩選出最適包被原濃度（0.01μg/mL）和抗體稀釋倍數大致范圍，進一步用間接ELISA確定抗體稀釋倍數，在此基礎上建立間接競爭ELISA（ci-ELISA）。具體步驟：用SPZ-BSA0.01μg/mL包被酶標板，4℃包被過夜，37℃封閉。用PBS稀釋SPZ標準品，濃度依次為4000、2000、1000、500、200、100、20、0ng/mL，取上述液體各50μL，加最適濃度的單抗50μL，其余步驟同1.3.3。同樣濃度做3個重復，取平均值繪制曲線，計算SPZ半數抑制質量濃度IC50。

1.5.2MAb特異性分析用ci-ELISA的方法檢測MAb與其他磺胺藥物的交叉反應。稱取一定量的磺胺氯吡嗪鈉（SPZ）、磺胺嘧啶鈉（SD）、磺胺對甲氧基嘧啶鈉（SMDZ）、磺胺氯噠嗪鈉（SCP）、磺胺甲氧噠嗪鈉（SMX）和磺胺二甲嘧啶鈉（SM2），用PBS稀釋成不同濃度的溶液，進行ci-ELISA測試。根據擬合線性曲線方程，計算各藥物IC50，然后計算藥物交叉反應率（CR）。交叉反應率=（產生50%抑制時SPZ的濃度/產生50%抑制時其他藥物的濃度）×100%。

2結果

2.1人工抗原紫外掃描將SPZ-OVA、SPZ和OVA溶液進行紫外掃描。SPZ在256nm和330nm處有兩個吸收峰，OVA在278nm處有吸收峰，偶聯物除256nm和330nm兩處吸收峰外，在380~400nm有吸收峰，為新生成的偶氮基團的吸收峰，初步證明藥物偶聯成功。

2.2陽性雜交瘤細胞篩選結果細胞融合后，從陽性克隆中挑選出分泌抗體僅針對SPZ-BSA且OD值高的11株雜交瘤細胞，進行2~4次亞克隆，用ci-ELISA進行競爭抑制篩選，從中篩選抑制率高的5株細胞（表1）。對其多次傳代并檢測，得到3株穩定分泌SPZ抗體的雜交瘤細胞株，分別為F7C10、F10D9和E11C8。將這3株細胞擴大培養腹腔接種小鼠，收集腹水。對腹水單抗檢測，挑選出高特異性的抗體F10D9，簡稱D9，來進行抗體特性的鑒定。

2.3MAb亞類分型腹水單抗MAbD9能和羊抗鼠IgM-HRP結合顯色，所以MAb類型為IgM，輕鏈類型為κ（表2）。

2.4MAb特性鑒定

2.4.1MAbIC50的確定

2.4.1.1MAb最佳稀釋倍數確定在最佳包被原濃度下，將腹水單抗梯度稀釋，用間接ELISA確定單抗最佳工作濃度。當包被原的濃度為0.01μg/mL時，對應的MAbD9工作濃度為1:4×105。

2.4.1.2ci-ELISA標準曲線的建立在最佳包被原濃度（0.01μg/mL）和抗體工作濃度（1:4×105）的基礎上建立ci-ELISA，對系列濃度稀釋的SPZ用ci-ELISA進行測定，以SPZ空白對照孔OD450值為B0，不同濃度的SPZ競爭反應孔OD450值為B，以B/B0值為縱坐標，SPZ質量濃度（ng/mL）的對數值為橫坐標，繪制標準曲線。SPZ在20~4000ng/mL范圍內，B/B0值與SPZ濃度的對數值呈線性關系，方程為y=-0.3369x+1.347，R2=0.994，IC50=326ng/mL。

2.4.2MAb特異性鑒定MAbD9與磺胺甲氧噠嗪（SMX）無交叉反應（CR<0.01%），而與其余供試藥品有較弱交叉反應（CR<10%）。

3討論

磺胺類藥物具有抗菌譜廣、價格低廉、使用方便等特點，因而在畜禽生產中廣泛應用，而藥物的不規范使用或過量使用會造成動物性食品中藥物殘留，引起系列人類健康問題，如產生耐藥性、過敏或毒性反應[12]。因此，食源性產品中磺胺藥物殘留的檢測具有必要性。目前檢測磺胺氯吡嗪鈉主要采用儀器聯用技術，如液質聯用LC-MS/MS、氣質聯用（GC-MS）法、薄層色譜分析法等，靈敏度可滿足檢測要求，其中LC-MC的最低檢測限（LOD）可達到650ng/kg[12]。與理化分析技術相比免疫學檢測具有高靈敏度和易操作的特點，在藥物殘留檢測方面具有廣闊應用前景。本研究以制備的單抗McAbD9建立的ELISA方法，線性范圍在20~4000ng/mL之間。盡管我國對磺胺氯吡嗪鈉最大殘留限量沒有具體規定，但明確規定磺胺類藥總殘留最大殘留限量為0.1mg/kg(相當于100ng/mL)。因而，本研究建立的ELISA對于磺胺氯吡嗪鈉超標殘留陽性樣本可進行有效檢測，但靈敏度有待提高，可用化學發光免疫分析技術(CLIA）建立更高靈敏度的檢測方法[13]。藥物小分子沒有免疫原性，SPZ通過和載體蛋白偶聯形成完全抗原，才能激發宿主產生相應抗體。

本研究制備的SPZ-OVA免疫小鼠后，小鼠可產生特異性抗體，其效價可達到1:6.4×104，證明合成的人工抗原具有良好的免疫原性。McAbD9對SPZIC50值為326ng/mL，與文獻[14]報道的SPZ單克隆抗體的IC50類似。由McAbD9的交叉反應實驗可知，所制備的抗體對SPZ的特異性比較強，與其他磺胺藥有較弱或無交叉反應。本研究對磺胺母核的氨基用重氮化方法以-N=N-與OVA相聯，因氨基可能是磺胺母核的重要抗原表位，以SPZ的氨基為偶聯基團的抗原制備的抗體，因失去重要表位而對具有磺胺母核的其他磺胺藥幾乎沒有交叉反應，也可能因為SPZ以磺胺母核端與蛋白載體相連，不能在抗原分子表面突出磺胺母核而被免疫活性細胞最大限度地識別所致。為此，若研制檢測磺胺類藥的試劑盒，可考慮以磺胺母核為基礎設計半抗原，并設法突出于抗原表面，研制類特異性抗體，這種研究思路已有研究表明是可行的[15]。

本研究采用有限稀釋法[16]進行融合細胞的亞克隆化，即將待克隆的細胞團在顯微鏡下標記，用移液槍將細胞吸出，置于96孔細胞板中稀釋，在顯微鏡下計數，選取細胞數約為100個/孔，將該孔細胞加至10mL培養基中，充分混勻后加至鋪有飼養細胞的96孔板中進行培養。采用這種方法單克隆率比較高，同時縮短了亞克隆的周期，簡單有效。本研究通過對雜交瘤細胞進行篩選后得到的單克隆抗體的效價和特異性對比免疫血清多抗都有了很大提高。

作者：張夢 單位：中國農業科學院上海獸醫研究所